6 loading bufferr永远跑在最前面吗

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产品型号:5×RNA Loading Buffer
产品价格:1元
厂商性质:3
所在地:北京市
发布时间: 13:37:01
浏览次数:743
5&RNA&Loading&Buffer,索莱宝上样缓冲液,R1050&含溴酚兰、二甲苯青和甘油等,DEPC处理水配制,RNase-free。按4ul样品加1ul&Buffer,混匀直接上样。R1050&&5&RNA&Loading&Buffer&&&1ml&&&50.00&&北京索莱宝公司欢迎您咨询咨询电话:010-&&&&&QQ:&&&联系人:蔡会芳&&&&&&&&&Email:产品信息长期有效
&250ul(10uM)
&250ul(10uM)
&250ul(10uM)
&250ul(10uM)
&Oligo&T16
&250ul(10uM)
通用RT-PCR试剂盒(M-MLV)
通用RT-PCR试剂盒(AMV)
DNA&Marker
MarkerⅠDNA&Ladder
MarkerⅡDNA&Ladder
MarkerⅢDNA&Ladder
50bp&DNA&Ladder
100bp&DNA&Ladder
100bp&plus&DNA&Ladder
250bp&DNA&Ladder
D2000&DNA&Ladder
D2000&plus&DNA&Ladder
1kb&DNA&Ladder
1kb&plus&DNA&Ladder
DL15000&DNA&Ladder
核酸电泳相关试剂
5&TBE&缓冲液
50&TAE&缓冲液
10&MOPS&缓冲液
100ml/500ml
GoldView&I型核酸染色剂(10000&)
GoldView&II型核酸染色剂(5000&)
SYBR&Green&I核酸染色剂(10000&)
50ul/100ul
SYBR&Green&II核酸染色剂(10000&)
50ul/100ul
40%丙烯酰胺(19:1)
100ml/500ml
6&DNA&Lodding&Buffer
10*DNA上样缓冲液
5&RNA&Loading&Buffer&
鲑鱼精DNA&10mg/ml
50&Denhardt溶液
20&SSC&PH7.0
100ml/500ml
20&SSC&PH7.4
100ml/500ml
20&SSC&PH5.3
100ml/500ml
20&SSPE&PH7.4
块速连接酶
快速连接试剂盒(T4连接酶)
北京索莱宝科技有限公司主营产品:G-418遗传霉素,Insulin牛胰岛素,Phytagel plantcell植物凝胶,酵母质粒提取试剂盒,RNAsaver(RNA长效保存液)
地址:北京市通州区景盛南四街15号联东U谷85A三层联系电话:86-010-手机:传真:86-010-
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之前我们医院实验室里western始终出不了结果,蛋白带非常乱,背景一片混乱,做细胞时还好一点,跑组织榈根本是乱七八糟,当时找原因,几乎把western的每一步都进行了排查,可结果一直不理想$ x+ E- q: Y7 ]. N+ s' |1 B2 ?) m* R2 ]
后来,无意中我用相同的样本,在别家医院实验室做,结果很好,于是,就怀疑到了loading buffer中的belta 巯基乙醇上面,原来,我这个实验室的一个博后,半年前一次性的配了一大瓶的loading buffer,其中加了belta巯基乙醇,一般来说,loading buffer都是室温保存的,所以他们也没有放入到冰箱里,但其实,belta 巯基乙醇有很大挥发性,应当现用现配,就算是室温保存,也不应当超过30天,超过30天后应当再补充,这位博后配了这一大瓶loading buffer之后立即就加了belta 巯基乙醇,但很长时间没人用,当实验室里人开始做western blotting的时候,又没有及时补充belta 巯基乙醇,也没有加DTT等其它还原剂,而且loading buffer每次用量很少,这一大瓶所有人都在用,但没人想到此时的belta 巯基乙醇已经挥发的差不多了,所以几乎没人能跑出很好的带来
" V7 R! B: J# V$ C, Q" `
我重新配了新的loading buffer之后,大家这一段时间以来结果都不错,经过这件事情,深刻感受到了实验真是差一点都不行啊,一个小环节出现问题,就可能导致整个实验失败4 _& h0 E" j( y# B, H: V
我现在加了belta 巯基乙醇的loading buffer,都保存到-20,这样保存时间应当会延长很久了
- d* z# P7 ]7 T: O&&x5 l+ B
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回复 8 Q5 B6 _( a" {! ~2 R. _
! y8 B! `" r$ `&&y2 E
其实只要密封得好,放室温也没问题的。我自己配的就是配好5xloading buffer w/o reducing reagent。一次拿1mL出来加还原剂,用个3个月没啥问题。放低温SDS会释出,每次都要加温很麻烦,感觉反而会加速还原剂的降解。
另外beta-ME这东西见光分解,要放暗格是真的。
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我们实验室都是配好后分装,放在-20的
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嗯 还是配制好进行分装,-20保存为好,用时提前室温融解
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, l$ O0 m5 \% B! ]* K
不用煮一下吗?觉得直接加的话还是有点粘稠!
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Powered by请问跑SDS-PAGE时,loading buffer什么时间加入好? - 实验交流 - 生物秀
标题: 请问跑SDS-PAGE时,loading buffer什么时间加入好?
摘要: [请问跑SDS-PAGE时,loading buffer什么时间加入好?] 1 请问跑SDS-PAGE时,loading buffer什么时间加入好?是先和蛋白样品混合后再加热上样?还是蛋白样品先单独加热变性后再加入loading buffer上样?2 顺便问一下5%的浓缩胶和12%的分离胶在室温下多久凝聚是正常的?请各位多多指教! 关键词:[SDS-PAGE 浓缩胶 等体积 分离胶 蛋白质 蛋白浓度 蛋白样品 复合物]……
1.请问跑-PAGE时,loading buffer什么时间加入好?是先和蛋白样品混合后再加热上样?还是蛋白样品先单独加热变性后再加入loading buffer上样?
2.顺便问一下5%的浓缩胶和12%的分离胶在室温下多久凝聚是正常的?
请各位多多指教!回复
1.loading buffer应该在加样前与蛋白等体积混匀,然后煮样5分钟,先单独加热变性蛋白样品后再加入loading buffer上样是错误的操作方法
2. 5%的浓缩胶和12%的分离胶在室温下十几分钟到半小时内凝固都是正常的,冬天半小时后凝固也是正常的
请教,loading buffer与蛋白等体积混匀吗?好像是按蛋白与的比值来加的吧。
不一定是等体积混合,他说的那种是预先配制的2× buffer,这种就是一份样品加一份buffer,有1×,4×等多种配制浓度,不同浓度添加比例都不一致,最终使你的混合液变成1×就对了。
buffer、样品溶液是混合后再加热的,这是使SDS和蛋白质充分结合形成复合物的一个过程,且SDS相对蛋白质必需过量添加,结合不充分会对后面结果造成干扰。
楼上的解释很合理哈,那如果样品浓度很低,而梳孔的上样量有限,可不可以不稀释成1×的呢,以保证SDS过量?
1×一般用于直接添加干粉样品,为了保证电泳的检测灵敏度想增加样品上样量,那可以选择4×的(同样上样量可以加3份样品,1份buffer,那么样品上样量就提高了)。但如果样品浓度过低也就没意义了,杂蛋白都不能检出(药典上对上样量是有要求的)浓度不足的话,得想办法把样品浓缩再检测。可控制蛋白浓度以保证SDS过量,SDS一般是高于蛋白质量的3~4倍就可以了。
等体积好像不是很好把,我一般是1:4,不过我的1× buffer的
最好估计蛋白质的ug数,以便个上样孔蛋白质等量。1XBUFFER 对各孔一样等体积加入, 再煮沸2-3分钟,冷却3分钟,加人样品孔。
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等体积好像不是很好把,我一般是1:4,不过我的1× buffer的
蛋白浓度低要用高浓度的buffer,比如5X的
样品少可以用2X的,这样在煮样时就可以防止煮干或挂壁损失
蛋白浓度低要用高浓度的buffer,比如5X的
样品少可以用2X的,这样在煮样时就可以防止煮干或挂壁损失 样品少可以用2X的,这样在煮样时就可以防止煮干或挂壁损失
样品加入eppendorf 管,盖好并用特制的盖夹固定,煮1-3分钟,不用担心煮干或挂壁损失,由于1XBUFF 含有蔗糖等物质。
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样品少可以用2X的,这样在煮样时就可以防止
煮沸之前加loading buffer, 我们用4×的,加的量是样品量的1/3,涡旋混匀,然后封口胶封好,放入固定板中,沸水中煮3min就可以了。封口胶封住后不用担心水蒸气进去。之前说的固定板,其实很简单,就用泡沫塑料什么的弄几个洞,把EP管插进去就行了。另外,一个很简单的思路,关于loading buffer先加还是后加的问题,如果后加,buffer还有什么用呢,蛋白加热煮沸,不就和煮鸡蛋一样了吗,呵呵,这是我原来犯过的错误Smile
12%的分离胶,因气温的不同凝胶时间不同,有一个简单的方法,正丁纯封胶后,如果分离胶凝固好了,会在胶与正丁纯间有一明显的介面。
5%浓缩胶,比分离胶时间要快,可以根据剩下的浓缩胶来看,观查中浓缩胶是否凝固,以判断,就是说如果中的浓缩胶凝固好了,那么制胶也就可以了。
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6×loading_buffer(RT201)
厂家:天根生化科技(北京)有限公司
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